Ir al menú de navegación principal Ir al contenido principal Ir al pie de página del sitio

Control biológico de cochinillas de las raíces del café con hongos entomopatógenos Biological control of coffee root mealybugs with entomopathogenic fungi

Cómo citar
Góngora, C. E., & Gil-Palacio, Z. (2020). Control biológico de cochinillas de las raíces del café con hongos entomopatógenos. Revista Cenicafé, 71(2), 53-65. https://doi.org/10.38141/10778/71204




Palabras clave
Puto barberi,

Metarhizium robertsii

Metarhizium anisopliae

azadiractina

Puto barberi

Metarhizium robertsii

Metarhizium anisopliae

azaridachtin

Puto barberi

Metarhizium robertsii

Metarhizium anisopliae

azadiractina

Sección
Artículos
Términos de licencia (Ver)
Creative Commons License

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0.

Carmenza Esther Góngora
Zulma Gil-Palacio

Resumen

Las cochinillas de las raíces del café son una plaga limitante en la caficultura colombiana y Puto barberi (Cockerell, 1895) (Hemiptera: Putoidae) es la especie que prevalece. Con el objetivo de proponer una estrategia para el control de esta plaga, se evaluaron en el laboratorio las cepas de Metarhizium anisopliae Ma 9236 y M. robertsii a concentraciones de 1x107 conidias/mL, con mortalidades entre 80% y 84% sobre P. barberi. También se evaluaron en plántulas de café infestadas con la plaga en tres ensayos. En el primero se emplearon plantas de 4 a 6 meses de edad, infestadas con hembras oviplenas de P. barberi, tratadas con 50 cm3 de: 1. M. anisopliae, 2. M. robertsii, ambos a 2x1010 conidias/L, y 3. agua como control. Con el agua, el porcentaje de infestación fue de 100% y se encontraron 25 cochinillas por planta. La aplicación de M. anisopliae disminuyó en 10% la infestación de la cochinilla y redujo la población en 55%. M. robertsii disminuyó la infestación en 40% y la población del insecto en 86%. En el ensayo 2 se comparó M. robertsii vs. agua con resultados similares al ensayo 1 y con una protección del 50% de las plantas. En el ensayo 3, los tratamientos correspondieron a: 1. M. robertsii (2x1010 conidias/L), 2. azadiractina 6% polvo soluble en agua (3 g/L), 3. clorpirifos 75% WG (3 g/L) y 4. Agua. En el tratamiento control agua el porcentaje de infestación fue del 65%, en los demás tratamientos las infestaciones estuvieron entre 11% y 22% difiriendo del control, pero siendo estadísticamente similares entre sí. M. robertsii es un candidato para ser evaluado en almácigos comerciales y campo.

Carmenza Esther Góngora, Centro Nacional de Investigaciones de Café Cenicafé

Investigador Científico III (https://orcid.org/0000-0002-3633-1077) Disciplina de Entomología, Centro Nacional de Investigaciones de Café, Cenicafé.


Zulma Gil-Palacio, Centro Nacional de Investigaciones de Café Cenicafé

Investigador Científico II (https://orcid.org/0000-0001-7013-1231). Disciplina de Entomología, Centro Nacional de Investigaciones de Café, Cenicafé.


Referencias (Ver)

  1. Ahmad, I., Jiménez-Gasco, M., Luthe, D. S., Shakeel, S. N., & Barbercheck, M. E. (2020). Endophytic Metarhizium robertsii promotes maize growth, suppresses insect growth, and alters plant defense gene expression. Biological Control, 144, 104167. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2019.104167
  2. Arcila, A. (2015). Instructivo: Cómo modificar una aspersora de palanca para controlar las cochinillas de las raíces. Cenicafé. https://www.cenicafe.org/es/publications/InstructivoCochillas.pdf
  3. Benavides, P., Gil, Z. N., Constantino, L. M., Villegas, C., & Giraldo, M. (2013). Plagas del café broca, minador, cochinillas harinosas, arañita roja y monalonion. En Federación Nacional de Cafeteros de Colombia (Ed.), Manual del cafetero colombiano: investigación y tecnología para la sostenibilidad de la caficultura (Vol. 2, pp. 215–260). Cenicafé.
  4. Belevich, O., Yurchenko, Y., Krivopalov, A., Kryukov, V., & Glupov, V. (2018). Effects of Metarhizium robertsii on the bloodsucking mosquito Aedes flavescens and non?target predatory insects (Odonata). Journal of Applied Entomology, 142(6), 632–635. https://doi.org/10.1111/jen.12509
  5. Bischoff, J. F., Rehnar, S. A., & Humber, R. A. (2009). A multilocus phylogeny of the Metarhizium anisopliae lineage. Mycologia, 101, 512–530. https://doi.org/10.3852/07-202
  6. Caballero, A., Ramos-Portilla, A. A., Suárez-González, D., Serna, F., Gil, Z. N., & Benavides, P. (2019). Los insectos escama (Hemiptera: Coccomorpha) de raíces de café (Coffea arabica L.) en Colombia, con registros de hormigas (Hymenoptera: Formicidae) en asociación. Ciencia & Tecnología Agropecuaria, 20(1), 69–92. https://doi.org/10.21930/rcta.vol20_num1_art:1250
  7. Centro Nacional de Investigaciones de Café . (2018). Anuario meteorológico cafetero 2017. http://hdl.handle.net/10778/660
  8. Dreyer, M., & Hellpap, C. (1991). Neem-a promising natural insecticide for small scale vegetable production in tropical and subtropical countries. Zeitschrift fuer Pflanzenkrankheiten und Pflanzenschutz (Germany, FR).
  9. Espinel, C., Torres, L. A., Villamizar, L. F., Bustillo, A. E., Zuluaga, M. V., & Cotes, A. M. (2018). Hongos entomopatógenos en el control biológico de insectos plaga. En A. M. Cotes (Ed.). Control biológico de fitopatógenos, insectos y ácaros (Vol. 1, pp. 334–367). Agrosavia. http://hdl.handle.net/20.500.12324/34071
  10. Gil, Z. N., Benavides Machado, P., & Villegas-García, C. (2015). Manejo integrado de las cochinillas de las raíces del café. Avances Técnicos Cenicafé, 459, 1–8. http://hdl.handle.net/10778/637
  11. Hu, G., & St. Leger, R. J. (2002). Field Studies Using a Recombinant Mycoinsecticide (Metarhizium anisopliae) Reveal that It Is Rhizosphere Competent. Applied and Environmental Microbiology, 68(12), 6383–6387. https://doi.org/10.1128/AEM.68.12.6383-6387.2002
  12. Instituto Colombiano Agropecuario (ICA). (2018). Plaguicidas Químicos. Recuperado de https://www.ica.gov.co/Areas/Agrícola/Servicios/Regulación y Control de-PlaguicidasQuimicos.aspx
  13. Liao, X., Lovett, B., Fang, W., & St Leger, R. J. (2017). Metarhizium robertsii produces indole-3-acetic acid, which promotes root growth in Arabidopsis and enhances virulence to insects. Microbiology, 163(7), 980–991. https://doi.org/10.1099/mic.0.000494
  14. Liao, X., O’Brien, T. R., Fang, W., & St. Leger, R. J. (2014). The plant beneficial effects of Metarhizium species correlate with their association with roots. Applied Microbiology and Biotechnology, 98(16), 7089–7096. https://doi.org/10.1007/s00253-014-5788-2
  15. Lowery, D. T., Isman, M. B., & Brard, N. L. (1993). Laboratory and Field Evaluation of Neem for the Control of Aphids (Homoptera: Aphididae). Journal of Economic Entomology, 86(3), 864–870. https://doi.org/10.1093/jee/86.3.864
  16. Moorhouse, E. R., Easterbrook, M. A., Gillespie, A. T., & Charnley, A. K. (1993). Control of Otiorhynchus sulcatus (Fabricius) (Coleoptera: Curculionidae) Larvae on a Range of Hardy Ornamental Nursery Stock Species Using the Entomogenous Fungus Metarhizium anisopliae. Biocontrol Science and Technology, 3(1), 63–72. https://doi.org/10.1080/09583159309355260
  17. Ramos Portilla, A. A., & Serna Cardona, F. J. (2004). Coccoidea de Colombia, con énfasis en las cochinillas harinosas (Hemiptera: pseudococcidae). Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 57(2), 2383-2411. https://revistas.unal.edu.co/index.php/refame/article/view/24191
  18. Sasan, R. K., & Bidochka, M. J. (2012). The insect-pathogenic fungus Metarhizium robertsii (Clavicipitaceae) is also an endophyte that stimulates plant root development. American Journal of Botany, 99(1), 101–107. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22174335/
  19. Tyurin, M. V., Kryukov, V. Yu., Yaroslavtseva, O. N., Elisafenko, E. A., Dubovskiy, I. M., & Glupov, V. V. (2016). Comparative analysis of immune responses in Colorado potato beetle larvae during development of mycoses caused by Metarhizium robertsii, M. brunneum, and M. pemphigi. Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology, 52(3), 252–260. https://doi.org/10.1134/S002209301603008X
  20. United States Environmental Protection Agency. (2018, diciembre 19). Pesticide registration improvement act- SoluNeem. https://www3.epa.gov/pesticides/chem_search/ppls/081899-00004-20181219.pdf
  21. Villegas, C., Bustillo Pardey, A. E., Zabala Echavarría, G., Benavides Machado, P., & Ramos Portilla, A. A. (2008). Cochinillas harinosas en cafetales colombianos. En A. E. Bustillo Pardey (Ed.), Los insectos y su manejo en la caficultura colombiana (pp. 342–354). Cenicafé.
  22. Villegas, C., Zabala Echavarría, G., Ramos, A. A., & Benavides Machado, P. (2009). Identificación y hábitos de cochinillas harinosas asociadas a raíces del café en Quindío. Revista Cenicafé, 60(4), 362–373. http://hdl.handle.net/10778/153
  23. Vittal Mallya Scientific Research Foundation. (2020, March 3). Solu neem, water soluble bio insectcide, botanical plant protactant, bio pesticides. Pesticides. http://www.vmsrf.org/html/solu-neem.html.
  24. Williams, D. J., & Willink, M. C. G. (1992). Mealybugs of Central and South America. CAB International Wallingford UK. https://www.cabi.org/isc/abstract/19921165001

Artículos más leídos del mismo autor/a