Control biológico de cochinillas de las raíces del café con hongos entomopatógenos

Carmenza Esther Góngora; Zulma Gil-Palacio

doi:10.38141/10778/71204

A continuação apresentamos os resultados da pesquisa para a cafeicultura colombiana:

Controle biológico de percevejos da raiz do café com fungos entomopatogênicos

Como Citar

Góngora, C. E., & Gil-Palacio, Z. (2020). Controle biológico de percevejos da raiz do café com fungos entomopatogênicos. Cenicafé Journal, 71(2), 53-65. https://doi.org/10.38141/10778/71204

PDF (Espanhol)

FLIP

Publicado: 29 Dezembro 2020

https://doi.org/10.38141/10778/71204

Palavras chave

Puto barberi,

Metarhizium robertsii

Metarhizium anisopliae

azadiractina

Puto barberi

Metarhizium robertsii

Metarhizium anisopliae

azaridachtin

Puto barberi

Metarhizium robertsii

Metarhizium anisopliae

azadiractina

##articleSummary.lastnum##

v. 71 n. 2 (2020): Cenicafe Journal

seção

Artigos

Termos de licença (See)

Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

Carmenza Esther Góngora

National Coffee Research Center-Cenicafé

https://orcid.org/0000-0002-3633-1077

Zulma Gil-Palacio

National Coffee Research Center-Cenicafé

https://orcid.org/0000-0001-7013-1231

Resumo

A cochonilha da raiz do café é uma praga limitante na cafeicultura colombiana e Puto barberi (Cockerell, 1895) (Hemiptera: Putoidae) é a espécie mais prevalente. Com o objetivo de propor uma estratégia de controle dessa praga, as cepas de Metarhizium anisopliae Ma 9236 e M. robertsii foram avaliadas em laboratório nas concentrações de 1x107 conídios / mL, com mortalidades entre 80% e 84% em P. barberi . Eles também foram avaliados em mudas de café infestadas com a praga em três experimentos. No primeiro, foram utilizadas plantas com 4 a 6 meses de idade, infestadas com fêmeas oviplen de P. barberi, tratadas com 50 cm3 de: 1. M. anisopliae, 2. M. robertsii, ambos a 2x1010 conídios / L, e 3 água como controle. Com água, o percentual de infestação foi de 100% e foram encontradas 25 cochonilhas por planta. A aplicação de M. anisopliae diminuiu a infestação da cochonilha em 10% e reduziu a população em 55%. M. robertsii diminuiu a infestação em 40% e a população de insetos em 86%. No ensaio 2, M. robertsii vs. água com resultados semelhantes ao teste 1 e com uma proteção de 50% das plantas. No ensaio 3, os tratamentos corresponderam a: 1. M. robertsii (2x1010 conídios / L), 2. azadiractina 6% pó solúvel em água (3 g / L), 3. clorpirifós 75% WG (3 g / L) e 4. Água. No tratamento controle com água a porcentagem de infestação foi de 65%, nos demais tratamentos as infestações ficaram entre 11% e 22%, diferindo do controle, mas sendo estatisticamente semelhantes entre si. M. robertsii é candidata a ser avaliada em mudas comerciais e de campo.

Biografia do autor (See)

Carmenza Esther Góngora, National Coffee Research Center-Cenicafé

Investigador Científico III (https://orcid.org/0000-0002-3633-1077) Disciplina de Entomología, Centro Nacional de Investigaciones de Café, Cenicafé.

Zulma Gil-Palacio, National Coffee Research Center-Cenicafé

Investigador Científico II (https://orcid.org/0000-0001-7013-1231). Disciplina de Entomología, Centro Nacional de Investigaciones de Café, Cenicafé.

Referências (See)

Ahmad, I., Jiménez-Gasco, M., Luthe, D. S., Shakeel, S. N., & Barbercheck, M. E. (2020). Endophytic Metarhizium robertsii promotes maize growth, suppresses insect growth, and alters plant defense gene expression. Biological Control, 144, 104167. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2019.104167
Arcila, A. (2015). Instructivo: Cómo modificar una aspersora de palanca para controlar las cochinillas de las raíces. Cenicafé. https://www.cenicafe.org/es/publications/InstructivoCochillas.pdf
Benavides, P., Gil, Z. N., Constantino, L. M., Villegas, C., & Giraldo, M. (2013). Plagas del café broca, minador, cochinillas harinosas, arañita roja y monalonion. En Federación Nacional de Cafeteros de Colombia (Ed.), Manual del cafetero colombiano: investigación y tecnología para la sostenibilidad de la caficultura (Vol. 2, pp. 215–260). Cenicafé.
Belevich, O., Yurchenko, Y., Krivopalov, A., Kryukov, V., & Glupov, V. (2018). Effects of Metarhizium robertsii on the bloodsucking mosquito Aedes flavescens and non?target predatory insects (Odonata). Journal of Applied Entomology, 142(6), 632–635. https://doi.org/10.1111/jen.12509
Bischoff, J. F., Rehnar, S. A., & Humber, R. A. (2009). A multilocus phylogeny of the Metarhizium anisopliae lineage. Mycologia, 101, 512–530. https://doi.org/10.3852/07-202
Caballero, A., Ramos-Portilla, A. A., Suárez-González, D., Serna, F., Gil, Z. N., & Benavides, P. (2019). Los insectos escama (Hemiptera: Coccomorpha) de raíces de café (Coffea arabica L.) en Colombia, con registros de hormigas (Hymenoptera: Formicidae) en asociación. Ciencia & Tecnología Agropecuaria, 20(1), 69–92. https://doi.org/10.21930/rcta.vol20_num1_art:1250
Centro Nacional de Investigaciones de Café . (2018). Anuario meteorológico cafetero 2017. http://hdl.handle.net/10778/660
Dreyer, M., & Hellpap, C. (1991). Neem-a promising natural insecticide for small scale vegetable production in tropical and subtropical countries. Zeitschrift fuer Pflanzenkrankheiten und Pflanzenschutz (Germany, FR).
Espinel, C., Torres, L. A., Villamizar, L. F., Bustillo, A. E., Zuluaga, M. V., & Cotes, A. M. (2018). Hongos entomopatógenos en el control biológico de insectos plaga. En A. M. Cotes (Ed.). Control biológico de fitopatógenos, insectos y ácaros (Vol. 1, pp. 334–367). Agrosavia. http://hdl.handle.net/20.500.12324/34071
Gil, Z. N., Benavides Machado, P., & Villegas-García, C. (2015). Manejo integrado de las cochinillas de las raíces del café. Avances Técnicos Cenicafé, 459, 1–8. http://hdl.handle.net/10778/637
Hu, G., & St. Leger, R. J. (2002). Field Studies Using a Recombinant Mycoinsecticide (Metarhizium anisopliae) Reveal that It Is Rhizosphere Competent. Applied and Environmental Microbiology, 68(12), 6383–6387. https://doi.org/10.1128/AEM.68.12.6383-6387.2002
Instituto Colombiano Agropecuario (ICA). (2018). Plaguicidas Químicos. Recuperado de https://www.ica.gov.co/Areas/Agrícola/Servicios/Regulación y Control de-PlaguicidasQuimicos.aspx
Liao, X., Lovett, B., Fang, W., & St Leger, R. J. (2017). Metarhizium robertsii produces indole-3-acetic acid, which promotes root growth in Arabidopsis and enhances virulence to insects. Microbiology, 163(7), 980–991. https://doi.org/10.1099/mic.0.000494
Liao, X., O’Brien, T. R., Fang, W., & St. Leger, R. J. (2014). The plant beneficial effects of Metarhizium species correlate with their association with roots. Applied Microbiology and Biotechnology, 98(16), 7089–7096. https://doi.org/10.1007/s00253-014-5788-2
Lowery, D. T., Isman, M. B., & Brard, N. L. (1993). Laboratory and Field Evaluation of Neem for the Control of Aphids (Homoptera: Aphididae). Journal of Economic Entomology, 86(3), 864–870. https://doi.org/10.1093/jee/86.3.864
Moorhouse, E. R., Easterbrook, M. A., Gillespie, A. T., & Charnley, A. K. (1993). Control of Otiorhynchus sulcatus (Fabricius) (Coleoptera: Curculionidae) Larvae on a Range of Hardy Ornamental Nursery Stock Species Using the Entomogenous Fungus Metarhizium anisopliae. Biocontrol Science and Technology, 3(1), 63–72. https://doi.org/10.1080/09583159309355260
Ramos Portilla, A. A., & Serna Cardona, F. J. (2004). Coccoidea de Colombia, con énfasis en las cochinillas harinosas (Hemiptera: pseudococcidae). Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 57(2), 2383-2411. https://revistas.unal.edu.co/index.php/refame/article/view/24191
Sasan, R. K., & Bidochka, M. J. (2012). The insect-pathogenic fungus Metarhizium robertsii (Clavicipitaceae) is also an endophyte that stimulates plant root development. American Journal of Botany, 99(1), 101–107. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22174335/
Tyurin, M. V., Kryukov, V. Yu., Yaroslavtseva, O. N., Elisafenko, E. A., Dubovskiy, I. M., & Glupov, V. V. (2016). Comparative analysis of immune responses in Colorado potato beetle larvae during development of mycoses caused by Metarhizium robertsii, M. brunneum, and M. pemphigi. Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology, 52(3), 252–260. https://doi.org/10.1134/S002209301603008X
United States Environmental Protection Agency. (2018, diciembre 19). Pesticide registration improvement act- SoluNeem. https://www3.epa.gov/pesticides/chem_search/ppls/081899-00004-20181219.pdf
Villegas, C., Bustillo Pardey, A. E., Zabala Echavarría, G., Benavides Machado, P., & Ramos Portilla, A. A. (2008). Cochinillas harinosas en cafetales colombianos. En A. E. Bustillo Pardey (Ed.), Los insectos y su manejo en la caficultura colombiana (pp. 342–354). Cenicafé.
Villegas, C., Zabala Echavarría, G., Ramos, A. A., & Benavides Machado, P. (2009). Identificación y hábitos de cochinillas harinosas asociadas a raíces del café en Quindío. Revista Cenicafé, 60(4), 362–373. http://hdl.handle.net/10778/153
Vittal Mallya Scientific Research Foundation. (2020, March 3). Solu neem, water soluble bio insectcide, botanical plant protactant, bio pesticides. Pesticides. http://www.vmsrf.org/html/solu-neem.html.
Williams, D. J., & Willink, M. C. G. (1992). Mealybugs of Central and South America. CAB International Wallingford UK. https://www.cabi.org/isc/abstract/19921165001