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Cría en el laboratorio de Puto barberi Cockerell, 1895 (Hemiptera: Putoidae) sobre tubérculos de Solanum phureja Laboratory rearing of Puto barberi Cockerell, 1895 (hemiptera: putoidae) on Solanum phureja tubers

Cómo citar
Giraldo-Jaramillo, M. (2021). Cría en el laboratorio de Puto barberi Cockerell, 1895 (Hemiptera: Putoidae) sobre tubérculos de Solanum phureja. Revista Cenicafé, 72(2), e72203. https://doi.org/10.38141/10778/72203




Palabras clave
Tubérculos de papa germinados

cochinillas

plaga de la raíz

tabla vida

café

Sprouted potato tubers

mealybugs

root blight

life table

coffee

Brotação de tubérculos de batata

cochonilhas

ferrugem de raiz

vida da tábua

café

Sección
Artículos
Términos de licencia (Ver)
Creative Commons License

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0.

Marisol Giraldo-Jaramillo

Resumen

Las cochinillas son consideradas plagas de importancia en diferentes cultivos alrededor del mundo. En Colombia, hay varias especies asociadas a las raíces del cultivo del café, que pueden ser limitantes en plantaciones menores de 24 meses, siendo necesario desarrollar investigaciones para generar estrategias de manejo. Se requiere desarrollar métodos de cría en el laboratorio que permitan suministrar una cantidad suficiente de insectos para los estudios. El objetivo de este trabajo fue evaluar el uso de tubérculos germinados de papa criolla como hospedante para P. barberi, determinando el ciclo de vida y la tabla de vida de fertilidad en el laboratorio (21,0±2,0°C, 65%±10% HR y 0:24 (L:D)). Se instalaron 50 ninfas sobre 50 tubérculos germinados de papa criolla (unidades experimentales), para determinar la duración y sobrevivencia de cada estado biológico, contabilizar número de ninfas/hembra y estimar los parámetros de tabla de vida de fertilidad. Se realizó un análisis descriptivo de la duración de cada estado, se construyó la curva de sobrevivencia y se estimaron los parámetros de la tabla de vida de fertilidad. La duración del ciclo de vida fue de 82,9±0,6 días y sobrevivencia del 74%. La duración de la fase adulta fue de 53,1±0,4 días y la duración promedio de ninfas/hembra fue de 63,6±6 días; con una tasa reproductiva neta de R0=47,5 (32,1–62,9) y tiempo generacional T=81,9 (77,9–85,6) días. Se concluye que el uso de tubérculos de papa criolla como hospedantes es una buena alternativa para el establecimiento de una colonia de P. barberi en el laboratorio, con fines experimentales.

Marisol Giraldo-Jaramillo, Centro Nacional de Investigaciones de Café

Investigador Científico I. Disciplina de Entomología, Centro Nacional de Investigaciones de Café, Cenicafé.


Referencias (Ver)

  1. Acevedo, F. E., Jiménez, M., Pimentel, J. P., & Benavides, P. (2020). Spatial Distribution of Mealybugs (Hemiptera: Coccomorpha: Coccoidea) in the Root System of Pruned and Non-pruned Coffea arabica Trees. Journal of Economic Entomology, 113(1), 172–184. https://doi.org/10.1093/jee/toz242
  2. Avila, C.J., & Parra, J.R.P. (2004). Influência de fatores edáficos sobre pragas de solo. En J. R. Salvadori, C. J. Avila, & M. T. B. Silva (Eds.), Pragas do solo no Brasil (pp. 66–97). Embrapa.
  3. Beck, S. D. (1980). Insect Photoperiodism (2a ed.). Academic Press. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-084380-0.50004-1
  4. Ben-Dov, Y. (1994). A systematic catalogue of the mealybugs of the world (Insecta: Homoptera: Coccoidea: Pseudococcidae and Putoidae) with data on geographical distribution, host plants, biology and economic importance. Intercept.
  5. Caballero, A., Ramos-Portilla, A. A., Suárez-González, D., Serna, F., Gil, Z. N., & Benavides, P. (2019). Los insectos escama (Hemiptera: Coccomorpha) de raíces de café (Coffea arabica L.) en Colombia, con registros de hormigas (Hymenoptera: Formicidae) en asociación. Ciencia & Tecnología Agropecuaria, 20(1), 69–92. https://doi.org/10.21930/rcta.vol20_num1_art:1250
  6. Fischer, T. W. (1963). Mass Culture of Cryptolaemus and Leptomastix: Natural Enemies of Citrus Mealybug. Agriculture Experiment Station Bulletin, 797, 1–39.
  7. Gavrilov, I. A., & Trapeznikova, I. V. (2007). Karyotypes and reproductive biology of some mealybugs (Insecta: Coccinea: Pseudococcidae). Comparative Cytogenetics, 1(2), 139–148. https://www.zin.ru/journals/compcyt/pdf/1/gavrilovtrapeznikova.pdf
  8. Giraldo-Jaramillo, M., Garcia-Gonzalez, J., & Rugno, J. B. (2019). Fertility Life Table of Leucoptera coffeella (Guérin-Mèneville) (Lepidoptera: Lyonetiidae) at Seven Temperatures in Coffee. American Journal of Entomology, 3(4), 70–76. https://doi.org/10.11648/j.aje.20190304.12
  9. Gil-Palacio, Z., Benavides Machado, P., & Constantino, L. M. (2016). Hemiptera: Coccoidea de las raíces del café y sus parasitoides en el Valle del Cauca. Revista Cenicafé, 67(1), 73–80. http://hdl.handle.net/10778/680
  10. Gil-Palacio, Z., Benavides Machado, P., & Villegas-García, C. (2015). Manejo integrado de las cochinillas de las raíces del café. Avances Técnicos Cenicafé, 459, 1–8. http://hdl.handle.net/10778/637
  11. Gil-Palacio, Z., Caballero, A., Ramos, A. A., Arcila, A. & Benavides Machado, P. (2021). Diagnóstico de las cochinillas de las raíces del café en ocho departamentos cafeteros de Colombia. Avances técnicos Cenicafé, 524, 1–8. https://doi.org/10.38141/10779/0524
  12. Giraldo-Jaramillo, M., García, A., & Parra, J.R. (2018). Biology, thermal requirements, and estimation of the number of generations of Hypothenemus hampei (Ferrari, 1867) (Coleoptera: Curculionidae) in the state of São Paulo, Brazil. Journal of Economic Entomology, 111(5), 2192–2200. https://doi.org/10.1093/jee/toy162
  13. Góngora, C. E., & Gil-Palacio, Z. (2020). Control biológico de cochinillas de las raíces del café con hongos entomopatógenos. Revista Cenicafé, 71(2), 53–65. https://doi.org/10.38141/10778/71204
  14. Herrbach, E., Maguet, J. L., & Hommay, G. (2016). Virus transmission by mealybugs and soft scales (Hemiptera: Coccoidea). En J. K. Brown (Ed.), Vector-mediated transmission of plant pathogens (pp. 147–161). APS Press. https://doi.org/10.1094/9780890545355.011
  15. Maia, A. de H. N., Luiz, A. J. B., & Campanhola, C. (2000). Statistical Inference on Associated Fertility Life Table Parameters Using Jackknife Technique: Computational Aspects. Journal of Economic Entomology, 93(2), 511–518. https://doi.org/10.1603/0022-0493-93.2.511
  16. Mani, M., & Shivaraju, C. (2016). Damage. En M. Mani & C. Shivaraju (Eds.), Mealybugs and their Management in Agricultural and Horticultural crops (pp. 117–122). Springer. https://doi.org/10.1007/978-81-322-2677-2
  17. Mansour, R., Grissa-Lebdi, K., Suma, P., Mazzeo, G., & Russo, A. (2017). Key scale insects (Hemiptera: Coccoidea) of high economic importance in a Mediterranean area: host plants, bio-ecological characteristics, natural enemies and pest management strategies – a review. Plant Protection Science, 53(1), 1–14. https://doi.org/10.17221/53/2016-PPS
  18. Meyer, J. S., Ingersoll, C. G., McDonald, L. L., & Boyce, M. S. (1986). Estimating Uncertainty in Population Growth Rates: Jackknife vs. Bootstrap Techniques. Ecology, 67(5), 1156–1166. https://doi.org/10.2307/1938671
  19. Mora, O. H., Ramos, A. A., & Bacca, T. (2018). Chinches harinosas en raíces de café y su flora arvense asociada en el departamento de Nariño. Boletín Científico Centro de Museos de Historia Natural, 22(2), 15–23. https://doi.org/10.17151/bccm.2018.22.2.1
  20. Parra, J. R. P. (1997). Técnicas de criação de Anagasta kuehniella, hospedeiro alternativo para a produção de Trichogramma. En J. R. P. Parra & R. A. Zucchi (Eds.), Trichogramma e controle biológico aplicado (pp. 121–150). FEALQ.
  21. R Software Team. (2019). R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing (3.6.1.) [Computer software]. https://www.r-project.org
  22. Rabinovich, J. E. (1980). Introducción a la ecología de poblaciones animales. Compañía Editorial Continental S.A.
  23. Rose, M., & Stauffer, S. (1997). Laboratory and Mass Rearing. En Y. Ben-Dov & C. J. Hodgson (Eds.), Soft Scale Insects: Their Biology, Natural Enemies and Control. (Vol. 7, pp. 397–416). Elsevier. https://www.elsevier.com/books/soft-scale-insects/ben-dov/978-0-444-89303-1
  24. Ross, L., Pen, I., & Shuker, D. M. (2010). Genomic conflict in scale insects: The causes and consequences of bizarre genetic systems. Biological Reviews, 807-828. https://doi.org/10.1111/j.1469-185X.2010.00127.x
  25. Suroshe, S. S., Gautam, R. D., & Fand, B. B. (2016). Biology of mealybug, Phenacoccus solenopsis tinsley on Parthenium. Indian Journal of Entomology, 78(3), 264–267. https://doi.org/10.5958/0974-8172.2016.00070.5
  26. Tauber, M. J., Tauber, C. A., & Masaki, S. (1986). Seasonal adaptations of insects. Oxford University Press.
  27. Teixeira, I., Botton, M., & Loeck, A. E. (2002). Avaliação de Inseticidas Visando ao Controle de Eurhizococcus brasiliensis (Hempel) (Hemiptera: Margarodidae) em Novos Plantios de Videira. Neotropical Entomology, 31(3), 457–461. https://doi.org/10.1590/S1519-566X2002000300017
  28. Triplehorn, C. A., & Johnson, N. F. (2005). Borror and DeLong’s introduction to the study of insects (7th ed). Thomson, Brooks/Cole.
  29. Villegas-García, C., Zabala Echavarría, G., Ramos, A. A., & Benavides Machado, P. (2009). Identificación y hábitos de cochinillas harinosas asociadas a raíces del café en Quindío. Revista Cenicafé, 60(4), 362–373. http://hdl.handle.net/10778/153
  30. Villegas-García, C., & Benavides Machado, P. (2011). Identificación de cochinillas harinosas en las raíces de café en departamentos cafeteros de Colombia. Revista Cenicafé, 62(1), 48–55. http://hdl.handle.net/10778/512
  31. Villegas-García, C., Peña, H. D., Muñoz, R. I., Martinez, H. E., & Benavides Machado, P. (2013). Aspectos del ciclo de vida de Puto barberi Cockerell (Hemiptera: Putoidae). Revista Cenicafé, 64(1): 31–41. http://hdl.handle.net/10778/524
  32. Williams, D. J., & Granara de Willink, M. C. (1992). Mealybugs of Central and South America. CAB International.